B-Aqua - Unio crassus

Unio crassus

Fiche crée par :
Grand Père le 24/05/2023 13:31:46

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Grand Père le 24/05/2023 17:49:35
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Mulette épaisse

Retrouvez dans cette fiche, toutes les informations sur les Unio crassus (Mulette épaisse) . D'où ils viennent, comment les maintenir en aquarium, comment les reproduire,...

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Taxinomie

Descripteur : Philipsson, 1788

Classe: Bivalvia

Ordre: Unionoida

Famille: Unionidae

Genre: Unio

Synonymes

Crassunio crassus (Philipsson, 1788)

Mya batava Maton & Rackett, 1807

Unio adonus Locard, 1889

Unio amnicus Rossmässler, 1836

Unio ampullaceus Locard, 1893

Unio ancyrensis subsp. louisei Kobelt, 1913

Unio andegavensis Locard, 1882

Unio andeliacus Bourguignat, 1889

Unio (Eolymnium) araxenus Drouët, 1881

Unio arenarum Bourguignat, 1882

Unio ater Nilsson, 1822

Unio ater subsp. irgizlaicus Lindholm, 1904

Unio ater var. irgizlaicus Lindholm, 1904

Unio atrovirens Rossmässler, 1836

Unio aturicus Locard, 1889

Unio badiellus Drouet, 1888

Unio badius Kokeil, 1831

Unio balbignyanus Locard, 1889

Unio baroni Servain, 1887

Unio batavellus Locard, 1885

Unio batavellus subsp. perconvexus Germain, 1904

Unio batavus Nilsson, 1822

Unio batavus subsp. acutus de Joannis, 1859

Unio batavus subsp. albensis Hazay, 1885

Unio batavus subsp. badensis Haas, 1910

Unio batavus subsp. baraceus de Joannis, 1859

Unio batavus subsp. belgicus Colbeau, 1868

Unio batavus subsp. distinguendus C.Boettger, 1912

Unio batavus subsp. elongatus Held, 1836

Unio batavus subsp. gibbosus Held, 1836

Unio batavus subsp. hexameri Haas, 1911

Unio batavus subsp. kobeltianus Haas, 1913

Unio batavus subsp. longus de Joannis, 1859

Unio batavus subsp. minimus de Joannis, 1859

Unio batavus subsp. navensis C.Boettger, 1912

Unio batavus subsp. ondovensis Hazay, 1885

Unio batavus subsp. palatinus Haas, 1911

Unio batavus subsp. probavaricus Haas, 1911

Unio batavus subsp. pseudoconsentaneus Geyer, 1911

Unio batavus subsp. radiata Germain, 1904

Unio batavus subsp. sabulosus Haas, 1910

Unio batavus subsp. sarratinus Moquin-Tandon, 1855

Unio batavus subsp. senotius de Joannis, 1859

Unio batavus subsp. sinuatus Charpentier, 1837

Unio batavus subsp. squamosus Charpentier, 1837

Unio batavus subsp. taunica Kobelt, 1886

Unio batavus var. belgicus Colbeau, 1868

Unio batavus var. incurvatus Colbeau, 1868

Unio batavus var. rivularis Moquin-Tandon, 1856

Unio batvus subsp. ovatus Charpentier, 1837

Unio baudoni Folin, 1888

Unio besnardi Germain, 1904

Unio besnardianus Bourguignat, 1889

Unio bosnensis Möllendorff, 1873

Unio bosnicus Locard, 1889

Unio brandisi Kobelt, 1910

Unio brevierei Locard, 1882

Unio brevirostris Küster, 1854

Unio byzantinus Drouët, 1879

Unio (Eolymnium) byzantinus Drouёt, 1879

Unio cantianus Kennard & B.B.Woodward, 1924

Unio carantoni Bourguignat, 1882

Unio carcasinus Sourbieu, 1887

Unio carinthiacus Rossmässler, 1836

Unio carneus Küster, 1854

Unio caroliensis Bourguignat, 1889

Unio castaneus Fitzinger, 1833

Unio catalaunicus Bourguignat, 1889

Unio caumonti Bourguignat, 1889

Unio chardoni Locard, 1893

Unio (Eolymnium) colchicus Drouët, 1881

Unio consentaneus Rossmässler, 1836

Unio consentaneus subsp. abnobae Kobelt, 1910

Unio consentaneus subsp. biandeti Kobelt, 1910

Unio consentaneus subsp. bodamicus Kobelt, 1910

Unio consentaneus subsp. dilatatus Kobelt, 1910

Unio consentaneus subsp. elongatus Kobelt, 1910

Unio consentaneus subsp. hohenwarti Kobelt, 1910

Unio consentaneus subsp. langi Kobelt, 1910

Unio consentaneus subsp. marisaensis Kobelt, 1911

Unio consentaneus subsp. subterminalis Kobelt, 1910

Unio consentaneus subsp. thayacus Kobelt, 1910

Unio corrugata Mauduyt, 1839

Unio courtillieri Hattemann, 1859

Unio crassatellus Bourguignat, 1882

Unio crassissimus Hanley, 1843

Unio crassulus Drouet, 1888

Unio crassus Philipsson, 1788

Unio crassus subsp. batavus Nilsson, 1822

Unio crassus subsp. chlebnikovi Zhadin, 1938

Unio crassus subsp. cytherea Küster, 1833

Unio crassus subsp. heimburgi F.Haas, 1911

Unio crassus subsp. ishmensis Zhadin, 1938

Unio crassus subsp. maximus Kobelt, 1872

Unio crassus subsp. okae Kobelt & Haas, 1911

Unio crassus subsp. ornatus Poliński, 1917

Unio crassus subsp. polonicus Polinski, 1917

Unio crassus subsp. thuringiacus Israel, 1913

Unio crassus var. ishmensis Zhadin, 1938

Unio crassus var. maximus Kobelt, 1872

Unio crassus var. okae Kobelt, 1911

Unio croaticus Drouët, 1881

Unio (Crassiana) cyprinorum Bourguignat, 1882

Unio cytherea Küster, 1833

Unio danemorae Bourguignat, 1882

Unio decurvatus Rossmässler, 1835

Unio desectus subsp. pursacensis Sturany, 1902

Unio diptychus Bourguignat, 1889

Unio dokici Drouet, 1884

Unio drouetii Dupuy, 1849

Unio dubisianus Locard, 1882

Unio dubisiopsis Locard, 1882

Unio duregicus Servain, 1886

Unio elegans Westerlund, 1867

Unio ellipsopsis Bourguignat, 1899

Unio euthymeanus Locard, 1889

Unio feliciani Bourguignat, 1882

Unio financei Locard, 1889

Unio fusculus Rossmässler, 1836

Unio fusculus Ziegler, 1835

Unio gallensteini Kobelt, 1910

Unio gangrenosus J.F.Schmidt, 1840

Unio gliscerus Locard, 1893

Unio gontierii Bourguignat, 1856

Unio gregorii Kobelt, 1911

Unio hamburgiensis Servain, 1888

Unio hassiae Haas, 1908

Unio hattemani Bourguignat, 1889

Unio heldii Küster, 1854

Unio ignari Bourguignat, 1889

Unio ignariformis Bourguignat, 1889

Unio ingrandiensis Bourguignat, 1889

Unio (Crassiana) irenjensis Kobelt, 1911

Unio irgizlaica Lindholm, 1904

Unio (Crassiana) irgizlaicus Lindholm, 1904

Unio jonicus Drouët, 1879

Unio jurianus Locard, 1889

Unio kochi Kobelt, 1886

Unio kungurensis Kobelt, 1911

Unio kungurensis subsp. chlebnikowi Kobelt, 1912

Unio kungurensis subsp. irenjensis Kobelt, 1912

Unio kungurensis subsp. sylwensis Kobelt, 1912

Unio kungurensis var. chlebnikovi Kobelt, 1911

Unio kungurensis var. irenjensis Kobelt, 1911

Unio kungurensis var. sylwensis Kobelt, 1911

Unio lambottei Malzine, 1867

Unio lancelevei Locard, 1893

Unio lemotheuxi Bourguignat, 1889

Unio lemovicincae Férussac, 1807

Unio ligericus Bourguignat, 1882

Unio ligericus subsp. subsinuatus Germain, 1904

Unio locardianus Bourguignat, 1882

Unio luxurians Küster, 1854

Unio macrorhynchus Bourguignat, 1882

Unio mariae Bourguignat, 1889

Unio materniacus Locard, 1889

Unio matronicus Bourguignat, 1882

Unio melantatus Locard, 1889

Unio melas Coutagne, 1882

Unio (Crassiana) mengrelicus Drouët, 1881

Unio merdiger Reeve, 1865

Unio mingrelicus Drouët, 1881

Unio mingrelicus subsp. stevenianiformis Zhadin, 1938

Unio mingrelicus var. gregorii Kobelt, 1911

Unio mingrelicus var. sobriewskii Rosen, 1925

Unio mingrelicus var. stevenianiformis Zhadin, 1938

Unio minutulus Servain, 1888

Unio musivus Spengler, 1793

Unio nana Lamarck, 1819

Unio neocomensis Drouët, 1881

Unio nessorhynchus Küster, 1854

Unio nicolloni Locard, 1889

Unio nubilus Locard, 1889

Unio occidentalis Locard, 1889

Unio orbus Locard, 1889

Unio ostiorum Servain, 1886

Unio oxyrhynchus Bourguignat, 1882

Unio phaseolus Kobelt, 1879

Unio piscinalis Rossmässler, 1836

Unio planus Studer, 1820

Unio potamius Bourguignat, 1882

Unio pruinosus J.F.Schmidt, 1840

Unio pseudocrassus Haas, 1909

Unio pseudolitoralis Clessin, 1877

Unio pseudolittoralis subsp. curonicus Riemenschneider, 1907

Unio pseudolittoralis var. curonicus Riemenschneider, 1907

Unio raddei Drouët, 1881

Unio raddei subsp. koutaisiana Kobelt, 1886

Unio redactus Drouët, 1889

Unio reniformis Rossmässler, 1836

Unio retusa Held, 1836

Unio riparia C.Pfeiffer, 1821

Unio rivalis Drouet, 1884

Unio rivularis Moquin-Tandon, 1856

Unio roseni Kobelt, 1912

Unio rubens Menke, 1828

Unio rugatus Menke, 1828

Unio ryckholti subsp. cuneata Malzine, 1867

Unio ryckholtii Malzine, 1867

Unio sanderi Bourguignat, 1862

Unio sandriopsis Servain, 1886

Unio savensis Drouet, 1882

Unio scissus Drouet, 1893

Unio seneauxi Bourguignat, 1889

Unio septentrionalis Bourguignat, 1882

Unio sequanicus Bourguignat, 1882

Unio serbicus Drouet, 1884

Unio sieversi Drouët, 1881

Unio sieversi subsp. kobelti Westerlund, 1890

Unio sinuolata Küster, 1833

Unio (Crassiana) sobrievskii Rosen, 1925

Unio sobriewskii Rosén, 1925

Unio socardianus Bourguignat, 1882

Unio stepanoffi Drouët, 1881

Unio (Crassiana) stevenianiformis Zhadin, 1938

Unio stevenianus Drouët, 1881

Unio stevenianus Stepanov, 1870

Unio striatulus Drouet, 1882

Unio striolatus Drouet, 1884

Unio subamnicus Locard, 1889

Unio subrobustus Servain, 1886

Unio subrobustus subsp. curta Locard, 1889

Unio subtilis Drouët, 1879

Unio surraulti Bourguignat, 1889

Unio szegedensis Halaváts, 1891

Unio tiguricus Servain, 1886

Unio travnicensis Kobelt, 1910

Unio truncatulus Drouet, 1882

Unio tumidus f. elegans Westerlund, 1867

Unio turicus Servain, 1886

Unio valliericus Bourguignat, 1889

Unio vegesackensis Bourguignat, 1888

Unio ventricosus Scholtz, 1853

Unio vescoi subsp. conemenosi Blanc, 1879

Unio visurgisinus Servain, 1888

Unio crassus subsp. bruguierianus Bourguignat, 1853

Unio crassus subsp. carneus Kuster, 1854

Unio crassus subsp. courtillieri Hattemann, 1859

Unio crassus subsp. crassus Philipson, 1788

Unio crassus subsp. jaeckeli Modell, 1950

Unio crassus subsp. jonicus Drouet, 1879

Unio crassus subsp. klemmi Modell, 1957

Unio crassus subsp. nanus Lamarck, 1819

Unio crassus subsp. riparius C.Pfeiffer, 1821

Noms Communs

Mulette épaisse

Membres du genre Unio

Unio crassus (Philipsson, 1788)

Unio douglasiae (Gray)

Origine géographique

Aire d'origine : Europe, Asie tempérée
Albanie; Arménie; L'Autriche; Azerbaïdjan; Biélorussie ; Belgique; Bosnie Herzégovine; Bulgarie; Croatie; Tchéquie ; Danemark; Estonie; Finlande; France (France (métropolitaine)); Géorgie; Allemagne; Grèce; Hongrie; Iran (République islamique d; Irak; Lettonie; Liechtenstein ; Lituanie; Luxembourg; Pays-Bas; Macédoine du Nord; Pologne; Roumanie; Fédération de Russie (Russie d'Europe centrale); Serbie; Slovaquie; Slovénie; Suède; Suisse; Dinde; Ukraine

Unio crassus est une espèce endémique de l'Europe. Elle est présente en Norvège, Suède,
Finlande, Danemark, Allemagne, Autriche, Suisse et Belgique. Des recherches
taxonomiques devraient permettre de montrer son éventuelle présence en Espagne, Italie et
Grèce. En Grande-Bretagne, cette nayade n'est connue qu'à l'état fossile.
En France, L'espèce occupe des cours d'eau avec une assez faible amplitude altitudinale : du niveau de
la mer, en Basse Loire, à moins de 300 m, dans le Massif central.
On la rencontre dans une grande partie du bassin de la Loire, le bassin de la Seine, celui du Rhin, du Rhône, et de la Meuse. En Côte d’Or, les données disponibles localisent l’espèce dans le bassin de la Brenne et du Serein.
Elle semble absente des bassins du sud-ouest.

Cette espèce est considérée comme une espèce variable répandue incorporant de nombreuses sous-espèces et synonymes. Il est signalé de l'Atlantique aux montagnes de l'Oural (Russie européenne) (Graf 2007), est répandu dans toute l'Europe (Bank et al. 2006) et se trouve dans la région du Tigre-Euphrate (Moyen-Orient) et plus à l'est dans le bassin de l'Amour. (russe orientale) (Graf 2007). L'espèce est absente du Royaume-Uni, de l'Irlande, de l'Islande, de l'Italie et de la péninsule ibérique. Sa distribution était autrefois continue mais est maintenant extrêmement inégale sur la majeure partie de son aire de répartition (D. Van Damme comm. pers. 2011).

La sous-espèce U. c. crassus a une distribution dans la majeure partie de l'Europe centrale; U. c. Gontierise trouve en Ukraine , dans la région pontique du Caucase-nord et dans le bassin transcaucasien de la rivière Arax ; U. c. mongolicus se trouve dans le bassin de l'Amour et le Primorye, au nord de Magadan (Sibérie) (Graf 2007).

Une autre sous-espèce Unio c. bruguierianus a une distribution qui englobe toute la Turquie asiatique jusqu'au bassin du Tigre et de l'Euphrate, de la Turquie à la Syrie et à l'Irak (Lopes-Lima, comm. pers., 2013).

Environnement

Paramètres

Milieu

Douce

5 à 9

Cette espèce habite des écosystèmes fluviaux et des lacs propres, avec des eaux courantes et des fonds sablonneux ou sablo-graveleux (Zajac 2009, Schultes 2010). En conséquence, il est vulnérable aux changements dans la chimie de l'eau, la composition des espèces de l'ichtyofaune environnante et la dégradation des vallées fluviales naturelles (Zajac et Zajac 2009). Les juvéniles sont particulièrement sensibles à la pollution de l'eau et la reproduction est empêchée chez les adultes avec des niveaux de nitrates supérieurs à 10 mg/l (Schulte 2010).

Cette espèce a besoin d'un poisson hôte pour réussir son recrutement. Les œufs sont libérés en petits paquets et ingérés par des espèces telles que Cottus gobio, Phoxinus phoxinus, Leuciscus cephalus, Scardinuis erythrophthalmus, Gymnocephalus cernua et Perca fluviatilis .. Les glochidies dépendent alors d'une période parasitaire de cinq semaines dans les branchies du poisson (Bachmann 2000). Différentes populations peuvent avoir des poissons hôtes différents (Van Damme, comm. pers. 2011). Le déclin des espèces de poissons en raison de la pollution, des prélèvements d'eau et de la prédation par des espèces non indigènes a finalement conduit à des déclins localisés d' U. crassus (Nordsieck 2010).

Le prédateur indigène de cette espèce était la loutre ( Lutra lutra ), mais l'introduction d'autres mammifères prédateurs d'Amérique tels que le rat musqué ( Ondathra zibethicus ), le raton laveur ( Procyon lotor ) et le vison d'Amérique ( Neovison vison ) a inévitablement contribué à déclin d' U. crassus en raison de la prédation directe de la moule et également en raison de la prédation accrue de l'espèce hôte (Bachmann 2000, Nordsieck 2010).

Critère : A2ce

L'espèce est protégée en France métropolitaine

L'espèce est classée en danger (EN A2ace) sur la base des pertes dans l'ensemble de l'aire de répartition. Cette espèce a subi des déclins localisés en raison de plusieurs processus de menace majeurs, notamment la pollution de l'eau, la construction de barrages, le drainage, la sédimentation et l'augmentation de la prédation. Les dernières preuves suggèrent que le déclin d' U. crassus en Europe au cours des trois dernières générations (environ 45 à 60 ans) est estimé à plus de 50 % et que les menaces pesant sur cette espèce sont connues et continueront d'augmenter. Si les trois sous-espèces devaient être évaluées séparément, alors sur la base des pertes de population au cours des 60 dernières années, Unio crassus crassus (> 50 %) et Unio crassus gontieri (> 50 %) devraient être répertoriées comme En danger et Unio crassus mongolicus (>80 %) en danger critique d'extinction.

En Grèce et en Turquie, le statut de certaines populations est incertain car il existe encore des problèmes taxonomiques non résolus qui doivent être pris en compte pour améliorer la qualité de l'évaluation de la conservation, étant donné que certaines espèces d'Unionidés contiennent des lignées cryptiques auparavant non reconnues.

Cette espèce est répertoriée dans la Directive Habitats de la CE (92/43/ECC) dans les Annexes II et IV (Bachmann 2000) bien que des recherches supplémentaires soient nécessaires sur les tendances et la distribution de la population. La protection et la gestion actives des sites peuvent contribuer à inverser le déclin des populations. Huit projets Life de la Communauté européenne pour des actions de conservation et de restauration des habitats ont inclus cette espèce dans les pays suivants : Danemark, Allemagne, France, Luxembourg, Suède et Pologne.

Cette espèce a connu des déclins localisés en raison de plusieurs processus de menace majeurs, notamment la pollution de l'eau, la construction de barrages, le drainage, la sédimentation et l'augmentation de la prédation. Cette espèce est vulnérable aux changements dans la chimie de l'eau, nécessitant des eaux propres des rivières qui coulent. Les juvéniles endobenthiques sont particulièrement sensibles aux modifications de la chimie de l'eau et la reproduction est empêchée chez les adultes dont les niveaux de nitrate dépassent 10 mg/l (Schulte 2010). Les juvéniles ont montré une mortalité accrue au-dessus des concentrations de 2,3 mg NO3-N/l (Klink 2004, Köhler 2006).

La réduction de la concentration en oxygène dissous est une menace majeure pour cette espèce. En Sibérie, les populations sont menacées par le transport des arbres abattus via les rivières et le surpâturage des berges. Dans les pays baltes, la pollution par les stations d'épuration urbaines, la construction de centrales hydroélectriques (D. Van Damme comm. pers. 2011) et l'augmentation des populations de castors (Rudzīte 2010) sont des menaces majeures pour les populations d'U. crassus .

Le prédateur indigène de cette espèce était la loutre ( Lutra lutra ), mais l'introduction d'autres mammifères prédateurs d'Amérique en Europe tels que le rat musqué ( Ondathra zibethicus ) , le raton laveur ( Procyon lotor ) et le vison d'Amérique ( Neovison vison) a inévitablement contribué au déclin de U. crassus . Le déclin des espèces hôtes en raison de la dégradation de l'habitat et de la prédation accrue a réduit le succès du recrutement, ce qui a eu un impact négatif sur les populations locales.

Description

Taille

: 5 à 7 cm SL

Respiration

Branchiale

Longévité

20 à 90 ans

Régime

Planctonivore

Unio crassus se retrouvant régulièrement avec ces espèces, voire parfois avec le genre Anodonta, une grande vigilance s'avère nécessaire pour la détermination.

Mulette de forme ovoïde (Longueur : 50 à 70 mm ; hauteur : 30 à 35 mm.), relativement courte et renflée, avec coquille à périostracum Le périostracum est la fine enveloppe qui constitue la partie la plus externe de la coquille des mollusques et des brachiopodes, entre autres. On le trouve aussi bien chez des espèces terrestres, marines ou dulçaquicoles. Le périostracum fait partie intégrante de la coquille. Il se forme en même temps que les autres couches de la coquille.(épiderme recouvrant les valves) brun foncé à noir.
Dent cardinale de la valve droite avec une crête irrégulièrement dentelée. Présence de dents latérales.
Nacre blanche.
Présence fréquente de faisceaux verts sur la face externe des valves.
Des confusions sont possibles avec Potomida littoralis et les espèces du genre Unio,
notamment pour les jeunes individus. Unio crassus se retrouvant régulièrement avec ces
espèces, voire parfois avec le genre Anodonta, une grande vigilance s'avère nécessaire pour
la détermination.

Les adultes peuvent vivre de 20 à 30 ans ; le maximum observé dans le nord de l'Europe est de 90 ans.
La longévité moyenne est de 40 ans, suggérant que trois générations seraient d'environ 100 ans.

IUCN
Il existe de nombreuses questions non résolues sur la taxonomie de cette espèce et le placement des variantes géographiques en tant que sous-espèces ou espèces distinctes. Par exemple, Graf (2007), suivant le concept d'espèce biologique, distingue trois groupes géographiques au sein d' Unio crassus , à savoir le groupe d'espèces U. crassus , U. c. Gontieri et U. c. mongolique . Kantor et al . (2010), suivant la méthode comparative, divisent le groupe d'espèces Unio crassus de Graf en six espèces distinctes.

Il est donc évident que la recherche moléculaire sur l' Unio crassuscomplexe est nécessaire de toute urgence. Il a été suggéré que le concept d'espèce du modèle comparatif est trop typologique. Le résultat est la description de nombreuses « espèces » qui se produisent en sympatrie (au lieu d'être isolées géographiquement) sans aucune preuve solide de la manière dont une évolution radiative a eu lieu dans le passé. Nous suivons donc le concept d'espèce biologique de Graf pour Unio crassus bien que, comme l'indique lui-même cet auteur, cette hypothèse ne repose pas non plus sur une base taxonomique solide. Cela a en effet été corroboré par le fait que récemment les populations ibériques d' U. crassus ont été retirées du complexe sur la base de la recherche moléculaire et reconnues comme une espèce endémique distincte, Unio tumidiformis Reis & Araujo, 2009.

Il est fort probable que la sous-espèce sibérienne, U. crassus mongolicus s'avérera soit appartenir au complexe Unio douglasiae (Asie de l'Est) comme Zhadin (1952) l'a déjà suggéré, soit être une espèce distincte (voir, par exemple, Kantor et al . 2010). Cela peut aussi être le cas pour Unio crassus gontieri qui peut être plus proche de Unio tigridis ou Unio terminalis du bassin Tigre-Euphrate (Graf 2007) et par extension pour Unio crassus bruguierianus du même bassin. Nous sommes également d'accord avec Van Helsdingen et al . (1996) que l'investigation moléculaire peut montrer que la sous-espèce U. crassus carneusprésent en Grèce et dans les territoires adjacents est également une espèce distincte. Son habitat principal, les lacs eutrifiés, n'est en effet pas le même que celui des autres sous-espèces européennes (rivières de plaine à faible concentration en nitrates).

La principale question est de savoir si ces contradictions taxonomiques et ces questions non résolues sur le degré de distinction génétique entre diverses « sous-espèces » rendent impossible la formulation d'une évaluation de la Liste rouge. La liste des synonymes de cette espèce est longue et est donnée dans Graf et Cummings (2010).

Régime Alimentaire

Unio crassus, comme toutes les nayades, est un filtreur et se nourrit des particules de
matières organiques transportées par le cours d'eau. Ce mode de nutrition est très favorable
à l'écosystème en permettant une forte diminution de la turbidité.

Dimorphisme

Pas de dimorphisme sexuel.

Maintenance

Paramètres

Température

0 10 20 25

6,5 7 7,5 9

2 4 8 10

Cette espèce est vulnérable aux changements dans la chimie de l'eau, nécessitant des eaux propres des rivières qui coulent. Les juvéniles endobenthiques sont particulièrement sensibles aux modifications de la chimie de l'eau et la reproduction est empêchée chez les adultes dont les niveaux de nitrate dépassent 10 mg/l (Schulte 2010). Les juvéniles ont montré une mortalité accrue au-dessus des concentrations de 2,3 mg NO3-N/l (Klink 2004, Köhler 2006).

La réduction de la concentration en oxygène dissous est une menace majeure pour cette espèce.

Disponibilité commerciale : Non disponible

Reproduction

Type

Autre

Difficulté

Difficile

Les sexes sont séparés et le mâle libère les gamètes directement dans l'eau. Contrairement à la Mulette perlière (Margaritifera margaritifera), les individus isolés ne peuvent pas devenir hermaphrodites. Entraînés par le courant, les spermatozoïdes sont récupérés par le système de filtration de la femelle qui produit un nombre considérable d'ovules, environ 200 000.
Après la fécondation, l'oeuf évolue en une larve glochidium, incubée dans le marsupium de la femelle. Le glochidium, mesurant 0,2 mm, et libéré ensuite dans le cours d'eau, doit, pour continuer son développement, passer dans le système branchial d'un poisson. L'Epinoche (Gasterosteus aculeatus) et l'Epinochette (Pungitius pungitius) sont les principaux poissons hôtes, mais d'autres espèces peuvent héberger la larve glochidium : la Perche (Perca fluviatilis), le Chevaine (Leuciscus cephalus), la Vandoise (Leuciscus leuciscus), le Rotengle
(Scardinius erythrophtalmus), le Chabot (Cottus gobio) et le Vairon (Phoxinus phoxinus). La larve, installée sur, puis dans la branchie du poisson hôte, se développe en parasite durant une période de cinq semaines. Cette phase s'avère indispensable et les larves non reprises par des poissons meurent au bout de quelques jours. La vie parasitaire constitue, à la fois, une phase de développement larvaire et une phase de dissémination de l'espèce, grâce aux déplacements du poisson hôte.
Après la phase parasitaire, la larve se transforme en véritable bivalve et quitte le poisson pour se fixer sur le fond du cours d'eau, en profondeur dans le sédiment.
(Diagnostic écologique pour le document d’objectif Rhin Ried Bruch de l’Andlau – Tome 5 : les Mollusques – Sept. 2005)

Le cycle de reproduction étant connu, il est possible d’élever ces animaux au laboratoire.

L’élevage de la mulette épaisse se fait en plusieurs étapes:
D'abord les moules femelles en âge de se reproduire sont répertoriées dans le cours d’eau. Pour cela les valves sont légèrement écartées pour vérifier si les branchies sont porteuses de larves. Si les branchies sont gonflées, les femelles remplies de larves sont par la suite transférées en laboratoire dans des aquariums alimentés par l’eau de rivière.
Dans un même temps, les poissons hôtes sont capturés dans les cours d'eau. Le vairon est l'espèce adaptée qui se capture également facilement. Les poissons hôtes sont par la suite maintenus dans des bassins alimentés à l'eau de rivière.
Entre les mois d'avril et de juin les femelles lâchent les larves appelées glochidies. Elles sont contrôlées sous microscopes et si elles sont bien développées, elles sont immédiatement ajoutées aux bassins contenant les vairons. Le parasitage des poissons se fait de manière autonome. La plus part du temps les larves se fixent aux branchies des poissons.
Quand les poissons sont infectés, ils sont transférés dans le système de récupération de moules. Il s'agit d'un circuit fermé où l'eau doit traverser un tamis à fines mailles. Quand après quatre semaines les jeunes moules se détachent des vairons elles peuvent être récupérées dans le tamis.
Ensuite, les juvéniles sont maintenus jusqu’au stade adulte dans des aquariums contenant l’eau de la rivière Our, à laquelle sont ajoutées des algues microscopiques et de fines particules organiques.
Au bout de 2 ans les jeunes atteignent la taille de 1,5 à 2 cm et peuvent, au cours de la troisième année, être relâchés dans leur milieu naturel.

Commentaires

Etymologie : Unio du latin "unir, réunir" pour les deux valves solidement unies, et crassus "gras, épais" pour l'épaisseur de sa coquille.

Utilisation traditionnelle et/ou commerciale :
La consommation occasionnelle des moules d'eau douce (parfois appelées naïades) est avérée localement.

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